Para realizar un buen frotis sanguíneo
- Realizarlo del tubo de muestra con EDTA, antes de las 2 horas desde la extracción
- Mezclar la muestra con al menos 8 inversiones completas
- Realizar el frotis en mesón, empleando láminas portaobjetos pulidas y frotador pulido.
- Conocer Hb y #GB para ajustar cantidad de sangre y ángulo del frotador
- Dejar una separación de 1cm de unos de los bordes. Colocar una gota de sangre de entre 1 a 3 mm con capilar o dispensador
- Con la mano más hábil, colocar el frotador antes de la gota de sangre con un ángulo de entre 25° a 45°
- Realizar un movimiento firme y continuo del frotador (sin mirar, ni dibujar)
- Limpiar el frotador
- Dejar secar al menos 5 minutos
- Fijar con metanol lo antes posible (antes de la primera hora)
- Emplear una coloración de Romanowsky completa: Wrigth, May-Gruwarld, Leishman o sus combinaciones con Giemsa.
- Corroborar el frotis obtenido con los criterios de calidad
Con relación a los reactivos
- Comprar metanol anhidro, absoluto y sin acetona
- La fijación usual es entre 3 a 5 minutos
- Cada nuevo lote de colorante debe ser filtrado antes de su uso
- El tiempo de coloración varia con cada marca y lote. Ajustar los tiempo de coloración. Los tiempos usuales van entre 3 a 10 minutos para un buen Wrigth.
- Preparar Buffer según la necesidad
- Emplear goteros para el metanol, colorante y buffer
- Ante cualquier indicio de contaminación, descartar el reactivo
Criterios de calidad de un frotis sanguíneo
Macroscópicas
- La cabeza ha de estar cerca de uno de los extremos del portaobjeto y la cola debe estar cercana al otro extremo del portaobjeto, sin llegar hasta él.
- Un área de trabajo suficientemente amplia, mínimo de 2,5 cm de longitud a 4 cm (¾ partes del portaobjeto).
- Transición gradual en el espesor del frotis, de un área gruesa (inicio) a delgada (cola)
- Coloración gradual del frotis, de intenso (inicio) a más claro (cola)
- Ausencia de estrías, ondas o interrupciones
- Borde cuadrado o recto.
- Ausencia de artefactos por la técnica de elaboración.
Microscópicas
- Las células sanguíneas están distribuidas de manera regular.
- Los espacios entre las células son claros.
- Los eritrocitos son de color rojo naranja
- Los gránulos eosinófilos son de color rojo-naranja
- Los gránulos neutrófilos son de color púrpura.
- Los gránulos basófilos son de color azul oscuro o morado.
- El citoplasma de los linfocitos es azul.
- Los núcleos de los leucocitos son de color azul a morado.
- En la tinción el precipitado del colorante debe estar ausente, en caso de existir este debe ser mínimo y no afectar significativamente la visualización.
- Las células rotas o no identificables deben ser una minoría. En ciertas patologías este fenómeno no puede ser evitado y este criterio podría no aplicar.
Los colores son referenciales.
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2 respuestas a «Recomendaciones»
Muy buena explicación en todas las lecciones
Gracias por valorar mi esfuerzo en el diseño del curso, así como en la creación del material.
Justamente esa es la diferencia entre un curso (información orientada al aprendizaje) y una charla o post de una web o red social.
La diferencia puede ser sutil, pero el propósito es distinto, así como su construcción.
Una cosa es la docencia (aula de bioanálisis al día) y la otra la divulgación (la web y redes sociales).
Saludos