Recomendaciones

Para realizar un buen frotis sanguíneo

  • Realizarlo del tubo de muestra con EDTA, antes de las 2 horas desde la extracción
  • Mezclar la muestra con al menos 8 inversiones completas
  • Realizar el frotis en mesón, empleando láminas portaobjetos pulidas y frotador pulido.
  • Conocer Hb y #GB para ajustar cantidad de sangre y ángulo del frotador
  • Dejar una separación de 1cm de unos de los bordes. Colocar una gota de sangre de entre 1 a 3 mm con capilar o dispensador
  • Con la mano más hábil, colocar el frotador antes de la gota de sangre con un ángulo de entre 25° a 45°
  • Realizar un movimiento firme y continuo del frotador (sin mirar, ni dibujar)
  • Limpiar el frotador
  • Dejar secar al menos 5 minutos
  • Fijar con metanol lo antes posible (antes de la primera hora)
  • Emplear una coloración de Romanowsky completa: Wrigth, May-Gruwarld, Leishman o sus combinaciones con Giemsa.
  • Corroborar el frotis obtenido con los criterios de calidad

Con relación a los reactivos

  • Comprar metanol anhidro, absoluto y sin acetona
  • La fijación usual es entre 3 a 5 minutos
  • Cada nuevo lote de colorante debe ser filtrado antes de su uso
  • El tiempo de coloración varia con cada marca y lote. Ajustar los tiempo de coloración. Los tiempos usuales van entre 3 a 10 minutos para un buen Wrigth.
  • Preparar Buffer según la necesidad
  • Emplear goteros para el metanol, colorante y buffer
  • Ante cualquier indicio de contaminación, descartar el reactivo

Criterios de calidad de un frotis sanguíneo

Macroscópicas
  • La cabeza ha de estar cerca de uno de los extremos del portaobjeto y la cola debe estar cercana al otro extremo del portaobjeto, sin llegar hasta él.
  • Un área de trabajo suficientemente amplia, mínimo de 2,5 cm de longitud  a 4 cm (¾ partes del portaobjeto).
  • Transición gradual en el espesor del frotis, de un área gruesa (inicio) a delgada (cola)
  • Coloración gradual del frotis, de intenso (inicio) a más claro (cola)
  • Ausencia de estrías, ondas o interrupciones
  • Borde cuadrado o recto.
  • Ausencia de artefactos por la técnica de elaboración.
Microscópicas
  • Las células sanguíneas están distribuidas de manera regular.
  • Los espacios entre las células son claros.
  • Los eritrocitos son de color rojo naranja
  • Los gránulos eosinófilos son de color rojo-naranja
  • Los gránulos neutrófilos son de color púrpura.
  • Los gránulos basófilos son de color azul oscuro o morado.
  • El citoplasma de los linfocitos es azul.
  • Los núcleos de los leucocitos son de color azul a morado.
  • En la tinción el precipitado del colorante debe estar ausente, en caso de existir este debe ser mínimo y no afectar significativamente la visualización.
  • Las células rotas o no identificables deben ser una minoría. En ciertas patologías este fenómeno no puede ser evitado y este criterio podría no aplicar.

Los colores son referenciales.

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2 respuestas a «Recomendaciones»

Gracias por valorar mi esfuerzo en el diseño del curso, así como en la creación del material.

Justamente esa es la diferencia entre un curso (información orientada al aprendizaje) y una charla o post de una web o red social.

La diferencia puede ser sutil, pero el propósito es distinto, así como su construcción.

Una cosa es la docencia (aula de bioanálisis al día) y la otra la divulgación (la web y redes sociales).

Saludos

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